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Agitador de tamiz: Ventajas sobre el tamiz manual

En el laboratorio, el tamiz es un instrumento muy importante en el análisis de partículas. Antes de la existencia del tamiz digital, el proceso de tamizado se realizaba pasando los materiales por una serie de tamices ordenados de mayor a menor, así, las partículas se iban separando por tamaño, desde las más gruesas a las más finas.

Con el avance de la tecnología, se logró automatizar la tarea del tamizado con los agitadores de tamiz, para así obtener resultados más eficientes y exactos al momento de procesar las muestras. Algunas de las ventajas de estos equipos digitales son:

Rapidez: Un agitador de tamiz puede procesar la muestra en un tiempo reducido, adicionalmente, al ser una tarea automatizada, permite que el trabajador del laboratorio no esté presente mientras el proceso se realiza, optimizando así su tiempo.

Precisión: La frecuencia de la vibración y la amplitud utilizada por el agitador de tamiz son consistentes, lo que entrega exactitud en los resultados, sobretodo cuando se realizan pruebas con repetición.

Flexibilidad: Al utilizar un agitador de tamiz se puede separar una variedad de materiales distintos, sobretodo si se requiere un análisis de una muestra que contenga cristales o líquidos. Es para este fin que la potencia y velocidad del proceso de tamizado se puede ajustar según el peso y densidad de la muestra.

Fuerza: Si sumamos el peso de la muestra, al peso del tamiz manual, puede ser esta una tarea que exija mucho esfuerzo físico por parte del trabajador del laboratorio y limita la cantidad de muestra que se puede tamizar de una sóla vez. El agitador de tamiz en cambio, puede pasar la muestra completa por 10 tamices diferentes sin limitaciones.

Con las facilidades proporcionadas por el agitador de tamiz, el trabajo en laboratorio puede ser más eficiente en tiempo y en resultados de los análisis de las diferentes muestras.

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Con el avance de la tecnología, se logró automatizar la tarea del tamizado con los agitadores de tamiz, para así obtener resultados más eficientes y exactos al momento de procesar las muestras. Algunas de las ventajas de estos equipos digitales son:

Rapidez: Un agitador de tamiz puede procesar la muestra en un tiempo reducido, adicionalmente, al ser una tarea automatizada, permite que el trabajador del laboratorio no esté presente mientras el proceso se realiza, optimizando así su tiempo.

Precisión: La frecuencia de la vibración y la amplitud utilizada por el agitador de tamiz son consistentes, lo que entrega exactitud en los resultados, sobretodo cuando se realizan pruebas con repetición.

Flexibilidad: Al utilizar un agitador de tamiz se puede separar una variedad de materiales distintos, sobretodo si se requiere un análisis de una muestra que contenga cristales o líquidos. Es para este fin que la potencia y velocidad del proceso de tamizado se puede ajustar según el peso y densidad de la muestra.

Fuerza: Si sumamos el peso de la muestra, al peso del tamiz manual, puede ser esta una tarea que exija mucho esfuerzo físico por parte del trabajador del laboratorio y limita la cantidad de muestra que se puede tamizar de una sóla vez. El agitador de tamiz en cambio, puede pasar la muestra completa por 10 tamices diferentes sin limitaciones.

Con las facilidades proporcionadas por el agitador de tamiz, el trabajo en laboratorio puede ser más eficiente en tiempo y en resultados de los análisis de las diferentes muestras.

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Aplicaciones de Cromatografía gaseosa con Espectrometría de masas

La cromatografía gaseosa, acoplada a una espectrometría de masas, es un proceso de laboratorio ampliamente utilizado. Gracias a la combinación de estas dos técnicas, se pueden obtener resultados cuantificables y confiables.

Pero esta técnica no es útil únicamente para fines científicos en laboratorios médicos, sino que también es universalmente utilizada para determinar los componentes de una serie de productos, además de dar más información sobre elementos de uso diario y claves para la salud humana.

Algunas de sus aplicaciones han sido:

  • Industria vitivinícola: El laboratorio Excell Ibérica, en España, estudió la contaminación por anisoles en los vinos, la cual, en un principio, se creía venía únicamente desde el corcho utilizado, pero gracias al uso de la cromatografía gaseosa con espectrometría de masas, se pudo distinguir en los vinos almacenados en bodegas, distintos contaminantes químicos que provenían desde el ambiente en el que estaban almacenados los vinos y que afectaba principalmente en su aroma. Gracias a estos resultados, se pudo obtener un mejor control de todos los elementos que tenían contacto con el vino durante su producción y almacenaje, como materiales plásticos, ladrillos, maderas e incluso el mismo aire con el que están en contacto.
  • Cigarros electrónicos: Utilizando la GC-MS, la Universidad de Carolina del Norte, en Estados Unidos, realizó un estudio publicado en la Revista PLOS Biology, en el que analizaron los componentes de los líquidos utilizados en los cigarros electrónicos. Gracias a la cromatografía gaseosa con espectrometría de masas, pudieron concluir que estos líquidos variaban enormemente en sus ingredientes entre una marca y otra, además de notar que entre más ingredientes poseían, más tóxicos resultaban para el organismo los e-liquids.

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  • Paltas: Un estudio del Departamento de Química de la Universidad de Texas, analizó aceite y cera creados con la cáscara de las semillas de palta. Mediante el método de la cromatografía gaseosa con espectrometría de masas, se identificaron más de 100 compuestos diferentes, muchos de ellos no presentes en la misma semilla de palta. Algunos de estos compuestos fueron alcohol behenílico, utilizado para medicamentos antivirales, así como también heptacosano, un inhibidor de las células tumorales.
  • Pesca: La Universidad de la República, en Uruguay, estudió la presencia de pesticidas presentes en peces de zonas aledañas a plantaciones agrícolas. Ayudados por la cromatografía gaseosa con espectrometría de masas, se logró identificar residuos de 30 pesticidas en el 96% de los especímenes estudiados, demostrando así que la gran mayoría de los peces consumidos en las localidades seleccionadas, han incorporado pesticidas a sus tejidos.
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Gabinetes de bioseguridad: Uso y mantenimiento básico

Los Gabinetes de bioseguridad son parte de aquellos equipos destinados a mejorar las condiciones en las que se realizan las actividades dentro de los laboratorios, las cuales pueden ser desde la identificación de microorganismos hasta investigaciones especializadas. 

Estos gabinetes tienen una serie de clasificaciones según su uso y capacidades, siendo cualquiera de ellos indispensables para obtener ambientes controlados durante el trabajo en el laboratorio, protegiendo así al trabajador, al producto y al medio ambiente.

Los tipos de gabinetes de bioseguridad son:

  • Clase I: Protegen al personal, el ambiente, pero no al producto que se trabaja.
  • Clase II: Protegen al personal, el ambiente y el producto. Éstas pueden ser Tipo A, B1, B2 y B3 y su diferenciación depende de la forma en que se recicla y extrae el aire del gabinete.
  • Clase III: Su principal característica es que es completamente cerrada y sellada para gases. Su diseño la hace ideal para el trabajo con agentes microbiológicos clasificados en el nivel de bioseguridad 4.

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Un punto importante al momento de instalar un gabinete de bioseguridad en el laboratorio, es su ubicación y para ello se debe considerar:

  • La ruta de circulación de los trabajadores.
  • La ubicación de los equipos de aire acondicionado y ventilación.
  • La ubicación de las puertas del laboratorio.
  • El tamaño del laboratorio versus el de las tomas de suministro y extracción de aire.
  • Las corrientes de aire creadas por diferencias de temperatura, así como cualquier evento que pueda generar flujo de aire.

Todas estas precauciones en la ubicación del equipo tienen como fin el prevenir que otras corrientes de aire interfieran con los patrones de aire del gabinete de bioseguridad, lo que puede generar que aire contaminado entre o salga del gabinete, poniendo en riesgo al personal del laboratorio.

Las precauciones de seguridad también deben ser cuidadosamente monitoreadas al momento de utilizar el gabinete. Es así como se deben tener en cuenta los siguientes procedimientos:

  • Planear detalladamente el procedimiento a realizar.
  • Permitir que el aire fluya dentro del gabinete por cinco minutos antes y después de utilizarlo.
  • Disponer el material y equipos a utilizar al menos 10 centímetros dentro del marco de la ventana frontal.
  • Desinfectar por completo el gabinete y los elementos que hayan estado en contacto con materiales contaminantes.
  • Encender la luz ultravioleta una vez apagado el gabinete.

Finalmente, para asegurar una mayor vida útil del equipo, se debe siempre llevar a cabo un mantenimiento riguroso de todos los componentes del gabinete de bioseguridad como la luz ultravioleta, el filtro HEPA, el indicador de presión, motor y ventilador.

Gabinete de Bioseguridad para el trabajo seguro en el laboratorio
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Todo sobre cromatografía líquida con espectrometría de masas

La cromatografía líquida con espectrometría de masas es un importante proceso de análisis que, como su nombre lo dice, combina las técnicas de cromatografía líquida para la separación y la de espectrometría de masas para la detección, identificación y cuantificación de compuestos orgánicos/organometálicos en una muestra.

La combinación de estas técnicas posee una sensibilidad muy alta, la cual se basa en la ionización de las moléculas, así como también, en la separación y detección de los iones que se produzcan, según la relación entre su masa y carga en un sistema al vacío.

Durante la cromatografía líquida, los iones llegan al detector, generando una señal eléctrica que a su vez es ampliada, procesada y registrada en un computador. Luego se da paso a la espectrometría de masas, la cual representa gráficamente los iones detectados en su relación masa/carga.

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En el momento en el que los componentes de la muestra pasan al espectrómetro de masas, mediante la interfaz donde son ionizados, el equipamiento que se utilice para la cromatografía líquida con espectrometría de masas puede realizar esta ionización mediante dos técnicas diferentes dentro de la ionización a presión atmosférica.

La primera de ellas es la llamada electrospray (ESI) y la segunda es la ionización química a presión atmosférica (APCI). Estas dos técnicas son compatibles con la gran mayoría de los solventes volátiles utilizados en la fase móvil de la cromatografía líquida.

Es así como la espectrometría de masas es especialmente potente cuando es combinada con la cromatografía líquida para realizar una separación previa. Esto resulta en un análisis que puede ser tanto cuantitativo como cualitativo de una muestra específica en el laboratorio.

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Qué es la rotación óptica y cómo se detecta con un polarímetro

La capacidad que presentan algunas sustancias, en una solución, de rotar el plano de polarización de la luz polarizada que incide sobre ella, se conoce como la rotación óptica, ésta se detecta utilizando un polarímetro.

Es así como las sustancias que rotan la luz en el sentido de las agujas del reloj, se llaman dextrógiras o isómeros ópticos (+) y las que rotan en sentido contrario, levógiras o isómeros ópticos (-).

Mediante la polarimetría se pueden distinguir aquellos isómeros ópticamente activos al medir la rotación óptica de una sustancia, lo cual también es útil para establecer la identidad y pureza enantiomérica de la sustancia, lo que la hace ideal para fines cuantitativos.

Por otro lado, los polarímetros detectan la rotación óptica de manera visual, igualando la intensidad de la luz sobre dos campos o mediante un sistema fotoeléctrico, siendo este último más efectivo y exacto que la medición visual.

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Al medir la rotación óptica, se debe utilizar un polarímetro que pueda detectar diferencias de al menos 0.05°, siempre que no se haya especificado de manera distinta en la monografía individual. Como fuente de luz se suele utilizar lámparas de sodio, vapor de mercurio, xenón o halógeno-tungsteno entre otras, siempre acompañadas de un dispositivo que permita trasmitir un haz luminoso monocromático.

En el momento de realizar el procedimiento utilizando un polarímetro, se debe tener en cuenta el promedio de al menos cinco determinaciones corregidas por la lectura del blanco de solvente y aire en el caso de los líquidos. En cambio con un polarímetro fotoeléctrico, se requiere de sólo una medición corregida por el blanco del solvente en el caso de soluciones y aire en el caso de líquidos.

En la medición de la rotación óptica, se obtendrán resultados más precisos si se evita la formación de burbujas de aire durante el llenado del tubo del polarímetro, si las muestras disueltas están homogéneas y si los elementos ópticos están perfectamente alineados.

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